選用來源于生物的天然藥物載體細胞外泌體作為DATS的遞送載體,具有多種優勢:首先,外泌體可以來源于患者自身的細胞,在藥物傳遞過程中減少了免疫原性;其次,外泌體作為一種膜結構載體,與脂質體結構類似,能夠通過其表面的膜蛋白與靶細胞膜融合, 將其負載的藥物直接運送到受體細胞中,避免了細胞吞噬-溶酶體途徑帶來的藥物降解及細胞毒性等問題;此外,不同來源的外泌體因其供體細胞的差異性而呈現出不同的特性。在使用外泌體裝載DATS來研究抗中流轉移作用中選用外泌體的供體細胞為肺轉移中流細胞B16BL6,研究表明,中流細胞外泌體的產生和釋放比正常細胞明顯升高,并帶有宿主細胞獨特的性質。外泌體載藥系統的臨床轉化研究與非臨床研究具有一定的差異。湖北組織樣本外泌體載藥參考價格

休眠性乳腺ai細胞會促使間充質干細胞（MSCs）釋放含有不同miＲNA(如miＲ-222/223)的外泌體，從而促進一部分ai細胞處于靜止期，并賦予抗藥性。有研究發現，間充質干細胞外泌體（MSC-Exo）能夠通過遞送miＲNA-142-3p抑制劑在體外和體內降低乳腺ai的致瘤性。在體外，MSC-Exo可有效遞送miＲ-142-3p抑制劑，降低miＲ-142-3p和miＲ-150水平，增加調控靶基因APC和P2X7Ｒ的轉錄。在體內，MSC-Exo能夠將抑制性寡核苷酸遞送到中流組織中以下調miＲ-142-3p和miＲ-150的表達水平。此外，MSC-Exo遞送的miＲ-100能夠通過調節乳腺ai細胞中mTOＲ/HIF-1α/VEGF信號軸，抑制體外血管生成，從而影響乳腺ai細胞的行為。上海整體項目外泌體載藥外泌體載阿霉素可以部分限制阿霉素穿過心血管內皮細胞,減少阿霉素在心臟部位的聚集,降低心臟毒性。

大分子蛋白類藥物可以通過以下方法進行外泌體載藥。Haney等人采用常溫下共孵育、加入皂素后孵育、反復凍融、超聲、擠出等多種不同的方法將過氧化氫酶包載到外泌體中。結果顯示，外泌體通過超聲和擠出兩種方式句有較高的載藥量，分別為26.1％和22.2％，通過被動擴散方式的載藥量jin為4.9％，但當加入句有透皮促進作用的皂素后，外泌體的載藥量會明顯提高至18.5％。值得注意的是，外泌體的載藥量不jin與載yao方式有關，也取決于藥物的性質、外泌體脂質的組成，而且不同的載yao方式也會影響細胞對外泌體的攝取。

天然來源的外泌體含有眾多內源性脂質、蛋白及核酸類物質,其自身具有一定的成藥潛力,例如間充質干細胞來源的外泌體在組織修復領域獲得了巨大成功。當外泌體用作遞送載體時,一般還需人為裝載藥物。理想的載yao方法不僅要實現較高的載藥效率,還應保留外泌體和藥物的功能和完整性。目前,在不破壞外泌體膜完整性的情況下將藥物有效載入到外泌體中仍是一個巨大挑戰。現有的載yao方法可分為分泌前載藥法和分泌后載藥法。分泌前載藥法通常將親代細胞與藥物共孵育(一般需要加轉染試劑),使藥物進入細胞質,細胞質中的藥物通過主動或被動的方式被分選到外泌體中,然后通過合適的提取方法即可獲得載藥的外泌體。分泌后載yao方法是目前常用的外泌體載藥策略,通常需要先分離提純外泌體,再將藥物載入其中。載藥的外泌體提純以后一般會通過靜脈注射、皮下注射、腹膜內注射或者中流處注射等方式進行疾病zhiliao。

在醫學載藥領域，多肽、蛋白質、DNA等生物大分子zhiliao藥物的穩定性差和吸收率低是普遍存在的問題，因此納米囊泡載藥體系應運而生。目前人工合成的納米囊泡中，針對高分子聚合物囊泡與低分子脂質體的研究很常見。然而，這些人工納米載藥體進入人體后，易引發自身免疫反應，從而被人體免疫系統qing除; 同時其靶向性差，因而載藥效率不高且具有一定的毒副作用。近年來，外泌體作為天然生物囊泡的成員之一，因具有介導細胞間信號轉導、 抗原呈遞和免疫應答等功能，兼具人工合成囊泡的小粒徑、脂溶、穩定、高滲透性和可改造性等特點，越來越多地被應用于藥物靶向遞送，有望成為藥物遞送系統發展過程中的一項重要突破。相同劑量的PTX，PTX-M1-Exos載藥體系和游離的PTX相比，對小鼠乳腺ai4T1的抑制率更高。湖北樣本外泌體載藥參考價格

樹突細胞分泌的外泌體表面會表達出CD9，有利于加強外泌體與靶細胞的融合，提高外泌體對藥物運輸的效率。湖北組織樣本外泌體載藥參考價格

外泌體作為納米級內源性載體囊泡，具有低免疫原性，可以利用天然獨特的來源透過細胞屏障；為球形空心結構，不需要設計結構而裝載藥物；為細胞間通信介質而用于遞送藥物；對外泌體修飾可獲得靶向性，提高藥物遞送的效率。但外泌體產量一直比較低，已有研究基于Fe2O3與聚乳酸?乙醇酸共聚物的生物可降解納米顆粒（NPs）提高外泌體產量，用LPS刺激THP-1巨噬細胞也會增加外泌體產量。由于外泌體的得率較低，載藥時應考慮藥物性質選擇合適的載yao方法，以達到外泌體的合理運用。湖北組織樣本外泌體載藥參考價格